威宁火腿是贵州著名的传统发酵肉制品,至今已有600多年的历史。威宁火腿由高原瘦肉型良种“乌金猪”后腿加工而成,该猪腿部肌肉紧实,肌纤维质量高,为威宁火腿的加工提供了上乘的原料[1]。目前,威宁火腿仍延用家庭作坊式模式,于每年冬至后开始制作,采用自然发酵法生产。自然发酵中的微生物主要来源于原料肉及周围环境,火腿中微生物种类复杂且易受到有害微生物的污染,因此产品质量受环境影响较大,严重时甚至会导致发酵过程的失败,引起火腿腐败变质[2]。
在现代发酵肉制品加工工艺中,使用人工接种来控制生产过程已经成为一种趋势[3]。与自然发酵相比,人工接种发酵不仅能保持产品质量稳定、缩短发酵时间,还能保证产品安全性,统一生产标准,延长产品货架期[4-5]。因此,分离、鉴定威宁火腿中的有益微生物就显得至关重要。本研究以威宁火腿为研究对象,使用划线培养法对其中的微生物进行分离并鉴定,同时对其耐盐、耐亚硝酸盐和耐低温特性进行研究,以期揭示威宁火腿中优势微生物分布,为实现其工业化生产提供科学理论依据;同时,可扩充我国肉用益生菌菌种库。
1.1.1 原料与试剂
成熟期1 年的威宁火腿,购于威宁彝族回族苗族自治县农贸市场,样品置于放有冰袋的保温箱中低温运输至实验室。
亚硝酸钠 山东烟台佳晶食品工业有限公司;氯化钠 国药集团化学试剂(上海)有限公司;革兰氏染液 北京索莱宝(Solarbio)科技有限公司;细菌基因组DNA提取试剂盒 北京天根生化科技有限公司;Ezup柱式酵母基因组DNA抽提试剂盒 生工生物工程(上海)股份有限公司。
1.1.2 培养基
甘露醇氯化钠琼脂(mannitol salt agar,MSA)液体培养基(牛肉浸膏5.0 g、䏡蛋白胨10.0 g、D-甘露醇10.0 g、氯化钠75.0 g、酚红1.5 mL、蒸馏水1 000 mL,pH 7.4f0.2,121 ℃灭菌20 min) 自制;MRS肉汤液体培养基、麦芽汁液体培养基 广东环凯微生物科技有限公司。
向上述液体培养基中各添加15.0 g/L琼脂,得到相应的固体培养基。MSA固体培养基、MRS固体培养基、麦芽汁固体培养基分别用于葡萄球菌、乳酸菌、酵母菌的分离培养。
AC2-4S1生物安全柜 新加坡艺思高科技有限公司;H1650-W微量台式高速离心机 湖南湘仪实验室仪器开发有限公司;721G可见分光光度计 上海精密科学仪器有限公司;HH系列数显恒温水浴锅 江苏金坛市金城国胜实验仪器厂;YX280/15手提式不锈钢压力蒸汽灭菌器 上海三申医疗器械有限公司;BSD-250培养箱上海博迅实业有限公司;JY系列电子天平 上海衡平仪器仪表厂;Tanon 1600蛋白核酸检测仪 上海天能科技有限公司;DYY-6D电泳仪 北京六一生物科技有限公司;SCIENTZ 09无菌均质器 宁波新芝生物科技股份有限公司;T100聚合酶链式反应(polymerase chain reaction,PCR)基因扩增仪 美国Bio-Rad公司;C-HGFI Nikon Intensilight荧光显微镜 日本Nikon公司。
1.3.1 样品处理
在无菌条件下,用无菌刀从威宁火腿表层和内部1.0~2.0 cm处分别切取5 g样品,放入盛有25 mL无菌生理盐水的无菌袋中。将无菌袋放入无菌均质器中拍打30 s,得均质液备用。
1.3.2 菌株的分离纯化
取上述均质液加入到无菌生理盐水中适度稀释后,吸取200 μL涂布于MRS固体培养基、MSA固体培养基和麦芽汁固体培养基中,37 ℃培养。用接种环挑取单菌落,采用平板划线法进行划线培养,重复操作直至获得纯种培养物。将纯化后菌株接种于斜面培养基上,于4 ℃保存。
1.3.3 菌种鉴定
1.3.3.1 形态学观察
菌落形态特征分析:观察并记录菌落的表面形貌、色泽、透明度等特征。
个体形态特征分析:挑取细菌菌体进行革兰氏染色后镜检;酵母菌通过水浸片法观察[6],记录菌体细胞形态。
1.3.3.2 DNA序列鉴定
参照细菌、酵母基因组DNA提取试剂盒说明书,提取细菌、酵母基因组DNA,并于-20 ℃条件下保存备用。细菌16S rRNA基因采用通用引物进行扩增:上游引物27F(5’-AGTTTGATCMTGGCTCAG-3’),下游引物1492R(5’-GGTTACCTTGTTACGACTT-3’)。酵母菌内部转录间隔区(internal transcribed spacer,ITS)序列扩增通用引物为:上游引物ITS1(5’-TCCGTAGGTGAACCTGCGG-3’),下游引物ITS4(5’-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3’)[7-8]。PCR反应体系(50 μL)为:Taq PCR Master Mix 25 μL、模板DNA 2 μL、引物各2 μL、无菌ddH2O 19 μL,混匀30 s。PCR反应条件:94 ℃预变性4 min,94 ℃变性30 s,45 ℃退火30 s,72 ℃延伸90 s,进行30 个循环,最后72 ℃延伸10 min。
PCR扩增产物经1.0%琼脂糖凝胶电泳检验后,送往生工生物工程(上海)股份有限公司测序。利用NCBI数据库,使用BLAST对基因的同源性进行分析,获取与目的基因序列同源性较高不同种序列。使用MEGA-X软件构建Neighbor-Joinging系统发育树[9-10],同时综合考虑菌株菌落特征和菌体形态,确认菌株名称。
1.3.4 微生物特性研究
1.3.4.1 耐盐特性
吸取活化3 代后的菌液200 μL,分别接种于NaCl质量分数为3%、6%和9%的选择性液体培养基中,37 ℃培养,以未接种培养基作为空白对照。细菌、酵母经10 h培养后,测定培养液在600 nm波长处的光密度(optical density,OD600 nm)[11]。
1.3.4.2 耐亚硝酸盐特性
吸取活化3 代后的菌液200 μL,接种于NaNO2添加量分别为0、150 mg/kg的选择性液体培养基中[12],37 ℃培养,其中前者为对照组。细菌、酵母经10 h培养后测定培养液的OD600 nm。耐受系数定义为实验组OD600 nm与对照组OD600 nm之比[13]。
1.3.4.3 耐低温特性
吸取活化3 代后的菌液200 μL,接种于选择性液体培养基中,于4 ℃条件下培养,37 ℃培养组设为对照组。细菌、酵母经10 h培养后测定培养液的OD600 nm。耐受系数为实验组OD600 nm与对照组OD600 nm之比。
使用Statistix 8.1软件对数据进行显著性分析,使用Origin 2017软件作图。每个实验重复3 次,结果表示为平均值±标准差。
对威宁火腿中的优势微生物进行分离纯化,共得到10 株菌,分别编号为WN1~WN10,通过形态学分析和DNA序列分析,鉴定威宁火腿中微生物的种类。
2.1.1 形态学分析
表1 威宁火腿中分离菌株的菌落特征及菌体形态
Table 1 Colony and cell morphology of the isolated strains
菌株编号 菌落特征 菌体形态WN1 微白色,菌落小,光滑圆整,边缘整齐 G+,成葡萄状排列WN2 微白色,菌落小,光滑圆整,边缘整齐 G+,成葡萄状排列WN3 微白色,菌落小,光滑圆整,边缘整齐 G+,成葡萄状排列WN4 微白色,菌落小,光滑圆整,边缘整齐 G+,成对或葡萄状排列WN5 白色,菌落小,光滑圆整,边缘整齐 G+,成对或成堆排列WN6 白色,菌落小,光滑圆整,边缘整齐 G+,成对或成堆排列WN7 白色,菌落小,光滑圆整,边缘整齐 G+,成对排列WN8 白色,菌落小,光滑圆整,边缘整齐 G+,成对排列WN9 乳白色,菌落较大,光滑圆整,边缘整齐,有酒香 菌体较大,卵圆形WN10 乳白色,菌落较大,光滑圆整,边缘整齐,有酒香 菌体较大,卵圆形
由表1可知:分离纯化得到的8 株细菌均为革兰氏阳性(G+)菌,菌落形态圆整,边缘整齐,成对、成堆或成葡萄状排列;2 株酵母菌菌落大而厚,表面光滑,呈卵圆形,均有酒香。
图1为细菌革兰氏染色镜检图像,图2为酵母菌镜检图像。
图1 威宁火腿中分离细菌的革兰氏染色镜检图像(×100)
Fig. 1 Microscopic pictures of the isolated bacterial strains with gram staining (× 100)
图2 威宁火腿中分离酵母菌的镜检图像(×100)
Fig. 2 Microscopic pictures of the isolated yeast strains (× 100)
2.1.2 DNA序列鉴定
图3 PCR扩增产物的琼脂糖凝胶电泳图
Fig. 3 Agarose gel electrophoresis of PCR amplification products
提取获得各菌株基因组DNA后进行PCR扩增。由图3可知,样品WN1~WN8扩增产物的分子质量约为1 500 bp,样品WN9、WN10扩增产物的分子质量约为500 bp,且扩增条带清晰、明亮可见。所有条带分子质量大小符合理论预期。
表2 威宁火腿中10 株分离菌株的鉴定结果
Table 2 Identification of the 10 isolated strains
菌株编号 鉴定结果WN1、WN2、WN3、WN4 马胃葡萄球菌(Staphylococcus equorum)WN5、WN6 木糖葡萄球菌(Staphylococcus xylosus)WN7、WN8 乳酸片球菌(Pediococcus acidilactici)WN9 变平滑假丝酵母菌(Candida metapsilosis)WN10 近平滑假丝酵母菌(Candida parapsilosis)
利用N C B I数据库,对分离菌株的D N A序列进行BLAST分析,确定菌种鉴定结果。由表2可知,威宁火腿的10 个分离菌株中包括4 株马胃葡萄球菌(Staphylococcus equorum)、2 株木糖葡萄球菌(Staphylococcus xylosus)、2 株乳酸片球菌(Pediococcus acidilactici)、1 株变平滑假丝酵母菌(Candida metapsilosis)和1 株近平滑假丝酵母菌(Candida parapsilosis)。
对比国内三大火腿,宣威火腿最显著的特点是表面存在大量耐盐的G+菌,其优势菌群包括葡萄球菌和微球菌[14]。黄艾祥[15]发现,云南干腌火腿中的优势细菌主要有马胃葡萄球菌、表皮葡萄球菌、肉葡萄球菌、木糖葡萄球菌、戊糖片球菌和变异微球菌等,其中葡萄球菌是云腿加工过程中的优势菌。样品中检出的酵母菌数量相对较少,经分离鉴定主要有红酵母、德巴利酵母、汉逊酵母、诞沫假丝酵母、弯假丝酵母及隐球酵母。蒋云升等[16]研究发现,在如皋火腿的自然发酵过程中,球菌、杆菌、酵母菌是优势菌群。余翔[17]研究发现,在现代化发酵技术生产的金华火腿中,细菌的优势种为乳酸菌,其次为葡萄球菌;在真菌方面,内部占优势的酵母菌主要是欧诺比假丝酵母、白色布勒掷孢酵母等。国外著名腌制火腿中,Jamon Iberico火腿发酵成熟过程中的优势菌包括葡萄球菌属和微球菌属,从Parma火腿表面样品中可以分离出乳球菌属细菌,从内部样品可以分离出耐盐菌[18-19]。Virgili等[20]从Italian火腿表面分离得到12 株酵母菌,经鉴定属于德巴利酵母属、假丝酵母属和汉森酵母属。
本研究分离鉴定得到的大多数微生物在上述国内外火腿(宣威火腿、如皋火腿、金华火腿、Jamon Iberico火腿、Parma火腿、Italian火腿)中较为常见,如马胃葡萄球菌、木糖葡萄球菌和乳酸片球菌。但也有几种微生物,如变平滑假丝酵母菌和近平滑假丝酵母菌,报道比较少,这可能是由于在不同生产环境下,不同火腿中的微生物种类存在差异。2004年,近平滑假丝酵母菌被确立为种水平上的新分类单元[21]。梁慧等[22]从传统腊鱼中分离筛选得到2 株产香酵母,其中1 株为近平滑假丝酵母菌。郭壮等[23]从生膜牛肉酱中分离到4 株变平滑假丝酵母菌,并且发现它们能使牛肉酱产膜,其在火腿中的作用有待进一步研究。
从分离得到的5 种菌中各选择1 株代表菌株(WN1、WN5、WN7、WN9、WN10),开展耐盐、耐亚硝酸盐和耐低温特性研究。
2.2.1 耐盐特性研究
耐盐能力是选择发酵肉制品发酵剂的一个重要因素,对发酵肉制品的感官质量和生物安全性有重要影响。筛选出的菌株要求能够在至少6%的食盐含量下正常生长[24-25]。因此,研究盐含量对5 株菌生长的影响。
图4 威宁火腿中分离微生物的耐盐特性
Fig. 4 Salt tolerance of the isolates
由图4可知,随着培养基NaCl含量的增加,各菌株的生长量均呈下降趋势。各菌株在NaCl含量为3%时生长量最大,表明高NaCl含量会抑制菌株的生长。其中,乳酸片球菌WN7在6% NaCl含量下生长量显著下降(P<0.05),降幅超过60%。当NaCl含量增加到9%时,木糖葡萄球菌WN5基本停止生长,马胃葡萄球菌WN1、变平滑假丝酵母菌WN9和近平滑假丝酵母菌WN10的生长量有所下降但仍能生长,故耐盐性较好。
潘明[26]从如皋火腿中分离、纯化得到耳式葡萄球菌、表皮葡萄球菌和木糖葡萄球菌3 种葡萄球菌,结果表明,适当浓度的NaCl能够促进3 种葡萄球菌的生长,其中耳式葡萄球菌的耐盐性最强,当NaCl含量达到8%时才对其有抑制作用,木糖葡萄球菌的耐盐性稍差,但在12% NaCl含量下依然能够生长,其耐盐特性超过马胃葡萄球菌WN1。
2.2.2 耐亚硝酸盐特性研究
肉制品生产过程中,亚硝酸钠是重要添加剂。肉类工业中,通常要求菌株在150 mg/kg的亚硝酸钠条件下可良好生长[27]。因此,研究添加亚硝酸钠对5 株菌生长的影响。
图5 威宁火腿中分离微生物的耐亚硝酸盐特性
Fig. 5 Nitrite tolerance of the isolates
由图5可知,在亚硝酸钠含量为150 mg/kg的培养基中,5 株菌均可生长。其中,马胃葡萄球菌WN1的耐受系数接近于1.00,表明其生长几乎不受亚硝酸盐添加的影响,耐亚硝酸盐能力显著高于其他菌株(P<0.05);木糖葡萄球菌WN5、乳酸片球菌WN7和近平滑假丝酵母菌WN10在亚硝酸钠添加量为150 mg/kg时生长有所抑制,但耐受系数均能达到0.70以上,耐亚硝酸盐能力次之;而变平滑假丝酵母菌WN9的耐受系数最低(0.62),对亚硝酸盐的耐受力最差。
李欣蔚等[28]研究剑门火腿中葡萄球菌、乳酸菌在亚硝酸盐添加量为150 mg/kg时的生长量,结果表明,5 株菌均具有一定的耐亚硝酸盐特性,其中葡萄球菌(S-1、S-2和S-3)对亚硝酸盐具有较强的耐受性,而乳酸菌(L-1和L-2)的耐受性相对较弱。潘明[26]从如皋火腿分离、纯化得到的耳式葡萄球菌、表皮葡萄球菌、木糖葡萄球菌和德巴利汉逊酵母均有较好的耐亚硝酸盐特性,其中葡萄球菌耐亚硝酸盐性最好。与本研究结果一致。
2.2.3 耐低温特性研究
温度在发酵肉制品的生产过程中起着至关重要的作用。通常情况下,发酵肉制品的腌制温度为4 ℃,最适发酵温度为25~30 ℃[29]。此外,中式火腿制作周期较长,其腌制工序一般不少于40 d。因此,本研究探讨低温(4 ℃)对5 株菌生长的影响。
图6 威宁火腿中分离微生物的耐低温特性
Fig. 6 Low temperature tolerance of the isolates
由图6可知,在培养温度降低至4 ℃时,5 个菌株均能维持一定的生长量,但不同菌株受低温的影响程度存在显著差异(P<0.05)。3 株细菌的耐受系数分别为0.40、0.04和0.12,故细菌对低温的耐受力依次为马胃葡萄球菌WN1>乳酸片球菌WN7>木糖葡萄球菌WN5,其中马胃葡萄球菌WN1的耐受系数明显高于其他细菌,耐低温性最好。在4 ℃培养温度下,变平滑假丝酵母菌WN9和近平滑假丝酵母菌WN10的耐受系数最高,分别为0.55和0.60,表明其在低温条件下依然能较好地生长。
刘晓强[30]从云南火腿中分离得到1 株变异微球菌和2 株木糖葡萄球菌,这3 株菌均能耐受6% NaCl和150 mg/kg亚硝酸盐。用MRS培养基分离得到2 株戊糖片球菌和2 株清酒乳杆菌,也均能耐受6% NaCl和150 mg/kg亚硝酸盐,但是均不耐低温。本研究筛选得到的木糖葡萄球菌WN5能耐受6% NaCl和150 mg/kg亚硝酸盐但不耐低温,与刘晓强[30]研究结果相一致;而乳酸片球菌WN7与其相比耐盐性较差。
从威宁火腿中分离出10 株微生物,经过菌落特征、个体形态分析以及DNA序列鉴定,最终确定为5 种菌,分别为马胃葡萄球菌、木糖葡萄球菌、乳酸片球菌、变平滑假丝酵母和近平滑假丝酵母。其中,马胃葡萄球菌WN1、变平滑假丝酵母菌WN9和近平滑假丝酵母菌WN10耐盐性较好,乳酸片球菌WN7耐盐性稍差,而木糖葡萄球菌WN5在9% NaCl含量下几乎不能生长。马胃葡萄球菌WN1对亚硝酸钠含量为150 mg/kg的培养基耐受力最好,平滑假丝酵母菌WN9的耐受力最差。在4 ℃培养温度下,变平滑假丝酵母菌WN9和近平滑假丝酵母菌WN10的耐低温能力显著高于其他菌株,细菌中马胃葡萄球菌WN1的耐受系数最高。因此,马胃葡萄球菌WN1和近平滑假丝酵母菌WN10耐盐、耐亚硝酸盐和耐低温能力较好,能够适应不同外部环境。
本研究揭示了威宁火腿中细菌和酵母的组成及特性,扩充了肉制品有益菌菌种库,为后续肉制品发酵剂的本土化研究和开发提供了理论基础。而在威宁火腿发酵过程中,微生物对火腿风味等品质的影响还有待进一步研究。
[1] 江萍, 欧阳旭燚. 贵州传统威宁火腿的加工工艺[J]. 食品科学, 1997,18(11): 41-43.
[2] 邵金昆, 杨芳, 杜丽娟, 等. 肉与肉制品中挥发性盐基氮测定方法的改进[J]. 肉类研究, 2009, 23(10): 58-60.
[3] 翁航萍, 宋翠英, 王盼盼. 对我国传统肉制品的探讨[J]. 肉类研究,2007, 21(12): 3-5.
[4] 黄盼盼, 蒋先芝, 田建卿. 火腿微生物研究进展[J]. 生物工程学报,2018, 34(9): 1410-1418. DOI:10.13345/j.cjb.170496.
[5] AL-AHMAD S. The effect of starter cultures on the physico-chemical,microbiological and sensory characteristics of semi-dried sausages[J].International Journal of Chemtech Research, 2015, 7(4): 2020-2028.
[6] 王传花, 周传云, 王传亮, 等. 一株低温耐酒精度苹果酒酵母菌的选育[J]. 农产品加工(学刊), 2008(3): 60-64. DOI:10.3969/j.issn.1671-9646-B.2008.03.017.
[7] FLYNN A N, LYNDON C A, CHURCH D L. Identification by 16S rRNA gene sequencing of an Actinomyces hongkongensis isolate recovered from a patient with pelvic actinomycosis[J]. Journal of Clinical Microbiology, 2013, 51(8): 2721-2723. DOI:10.1128/JCM.00509-13.
[8] CINDY D G, NELLY C, VALÉRIE B, et al. 16S rDNA analysis of bacterial communities associated with the hyper accumulator Arabidopsis halleri grown on a Zn and Cd polluted soil[J].European Journal of Soil Biology, 2014, 60: 16-23. DOI:10.1016/j.ejsobi.2013.10.006.
[9] GIAMMARIOLI M, CEGLIE L, ROSSI E, et al. Increased genetic diversity of BVDV-1: recent findings and implications thereof[J].Virus Genes, 2015, 50(1): 147-151. DOI:10.1007/s11262-014-1132-2.
[10] MAHONY TIMOTHY J, MCCARTHY FIONA M, GRAVEL JENNIFER L, et al. Genetic analysis of bovine viral diarrhoea viruses from Australia[J]. Veterinary Microbiology, 2005, 106(1/2): 1-6.DOI:10.1016/j.vetmic.2004.10.024.
[11] 徐鑫, 王茜茜, 王晓蕊, 等. 传统农家大酱中耐盐性乳酸菌的分离与鉴定[J]. 食品与发酵工业, 2014, 40(11): 33-40. DOI:10.13995/j.cnki.11-1802/ts.201411006.
[12] 王海燕. 湖南腊肉源产香葡萄球菌的筛选、鉴定及其产香机理研究[D]. 北京: 中国农业大学, 2005: 27-28.
[13] 赵莹, 朱丹, 石叶帆, 等. 发酵酱油豆豉中优势霉菌的筛选及功能分析[J]. 食品科技, 2018, 43(6): 18-22. DOI:10.13684/j.cnki.spkj.2018.06.004.
[14] 李平兰, 沈清武, 吕燕妮, 等. 宣威火腿成熟产品中主要微生物菌相构成分析[J]. 中国微生态学杂志, 2003(5): 12-13. DOI:10.3969/j.issn.1005-376X.2003.05.007.
[15] 黄艾祥. 云南干腌火腿品质特征形成与微生物作用研究[D]. 重庆:西南大学, 2006: 83-84.
[16] 蒋云升, 郭本功, 席军, 等. 如皋火腿微生物菌群分析[J].扬州大学烹饪学报, 2 0 0 4(3): 1 0-1 2. D O I:1 0.3 9 6 9/j.issn.1009-4717.2004.03.003.
[17] 余翔. 金华火腿现代化发酵工艺中微生物区系研究[D]. 重庆: 西南农业大学, 2005: 7-8.
[18] LORI D, GRISENTII M S, PAROLAIR G, et al. Microbiology of drycured ham[J]. Industria Conserve, 2005, 80: 23-32.
[19] SANZ Y, FADDA S, VIGNOLO G, et al. Hydrolytic action of Lactobacillus casei CRL 705 on pork muscle sarcoplasmic and myofibrillar proteins[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry,1999, 47(8): 3441-3448. DOI:10.1021/jf981255n.
[20] VIRGILI R, SIMONCINI N, TOSCANI T, et al. Biocontrol of Penicillium nordicum growth and ochratoxin A production by native yeasts of dry cured ham[J]. Toxins, 2012, 4(2): 68-82. DOI:10. 3390/toxins4020068.
[21] TAVANTI A, DAVIDSON A D, GOW N A, et al. Candida orthopsilosis and Candida metapsilosis spp. nov. to replace Candida parapsilosis groups Ⅱ and Ⅲ[J]. Journal of Clinical Microbiology,2005, 43(1): 284-292. DOI:10.1128/JCM.43.1.284-292.2005.
[22] 梁慧, 马海霞, 李来好. 腊鱼产香酵母菌的筛选及其发酵产香特性初步研究[J]. 食品工业科技, 2011, 32(12): 213-217. DOI:10.13386/j.issn1002-0306.2011.12.075.
[23] 郭壮, 董蕴, 尚雪娇, 等. 致牛肉酱生膜菌的分离鉴定及其生膜能力验证[J]. 中国调味品, 2018, 43(11): 59-63. DOI:10.3969/j.issn.1000-9973.2018.11.011.
[24] SANTOS B A D, CAMPAGNOL P C B, FAGUNDES M B, et al.Adding blends of NaCl, KCl, and CaCl2 to low-sodium dry fermented sausages: effects on lipid oxidation on curing process and shelf life[J].Journal of Food Quality, 2017(2): 1-8. DOI:10.1155/2017/7085798.
[25] 马德功. 发酵香肠中乳酸菌的分离、筛选及其应用[D]. 济南: 山东轻工业学院, 2008: 19-24.
[26] 潘明. 如皋火腿发酵菌群与火腿品质关系研究[D]. 扬州: 扬州大学,2007: 39-42.
[27] 李凤彩, 程文新, 谢华, 等. 发酵香肠菌种筛选标准探讨[J]. 食品科技, 2002, 23(6): 78-79. DOI:10.13386/j.issn1002-0306.2002.06.032.
[28] 李欣蔚, 迟原龙, 贾冬英, 等. 剑门火腿菌相构成及主要腐败菌特性分析[J]. 中国酿造, 2012, 31(11): 132-134. DOI:10.3969/j.issn.0254-5071.2012.11.035.
[29] 马德功, 王成忠, 崔文文, 等. 发酵香肠乳酸菌发酵剂筛选标准[J].肉类研究, 2007, 21(12): 31-33.
[30] 刘晓强. 云南火腿中菌种的分离筛选及在发酵火腿中的应用[D].长春: 吉林农业大学, 2008: 22-31.
Isolation, Identification and Tolerance Characteristics of Microorganisms from Weining Ham
ZHANG Shiyi, TANG Nan, HUANG Pan, et al. Isolation, identification and tolerance characteristics of microorganisms from Weining ham[J]. Meat Research, 2019, 33(8): 12-17. DOI:10.7506/rlyj1001-8123-20190625-147. http://www.rlyj.net.cn